Àcid desoxiribonucleic

De Viquipèdia
(S'ha redirigit des de: ADN)
Dreceres ràpides: navegació, cerca
«ADN» redirigeix aquí. Vegeu-ne altres significats a «ADN (desambiguació)».
L'estructura de part d'una doble hèlix d'ADN.

L'àcid desoxiribonucleic (ADN o DNA) és un àcid nucleic que conté les instruccions genètiques utilitzades en el desenvolupament i funcionament de tots els éssers vius coneguts, així com en alguns virus. La funció principal de les molècules d'ADN és l'emmagatzematge d'informació a llarg termini. L'ADN és sovint comparat a un conjunt de plantilles, una recepta, o un codi, car conté les instruccions requerides per produir altres components de les cèl·lules, com ara proteïnes i molècules d'àcid ribonucleic (ARN). Els segments d'ADN que porten aquesta informació genètica reben el nom de gen, però altres seqüències d'ADN tenen una funció estructural o estan implicats en la regulació de l'ús d'aquesta informació genètica.

Des d'un punt de vista químic, l'ADN es compon de dos llargs polímers d'unitats simples anomenades nucleòtids, amb un tronc compost de sucres i grups fosfats units per enllaços èster. Aquestes dues cadenes s'estenen en direccions oposades l'una de l'altra, i per tant són antiparal·leles. Cada sucre està unit a una d'entre quatre tipus de molècules anomenades bases: Adenina, Timina, Citosina i Guanina. És la seqüència d'aquestes quatre bases al llarg de la cadena la que codifica la informació. La informació és interpretada utilitzant el codi genètic, que especifica la seqüència dels aminoàcids en les proteïnes. El codi és llegit per mitjà de la còpia de segments d'ADN en l'àcid nucleic relacionat ARN, en un procés anomenat transcripció.

Dins de les cèl·lules, l'ADN s'organitza en estructures anomenades cromosomes. Aquests cromosomes són duplicats abans que les cèl·lules es divideixin, en un procés anomenat replicació de l'ADN. Els organismes eucariotes (animals, plantes, fongs i protists) emmagatzemen l'ADN dins del nucli cel·lular, mentre que en els procariotes (eubacteris i arqueobacteris), es troba dins del citoplasma de la cèl·lula. Dins dels cromosomes, proteïnes cromatines com ara les histones compacten i organitzen l'ADN. Aquestes estructures compactes guien la interacció entre l'ADN i altres proteïnes, ajudant a controlar quines parts de l'ADN són transcrites.

Taula de continguts

Propietats químiques

Estructura química de l'ADN. Els enllaços d'hidrogen apareixen com a línies de punts.

L'ADN és un polímer llarg compost d'unitats que es repeteixen anomenats nucleòtids.[1][2] La cadena d'ADN té una amplada d'entre 22 i 26 Ångströms (2,2-2,6 nanòmetres), i un nucleòtid té una llargada de 3,3 Å (0,33 nm).[3] Tot i que cada unitat repetitiva individual és molt petita, els polímers d'ADN poden ser molècules enormes que contenen milions de nucleòtids. Per exemple, el cromosoma humà més gran, el cromosoma número 1, té una llargada d'aproximadament 220 milions de parells de bases.[4]

En els organismes vius, l'ADN no sol existir en forma de molècula única, sinó com un parell de molècules estretament associades.[5][6] Aquestes dues cadenes s'entrellacen com lianes, formant una doble hèlix. Els nucleòtids repetits contenen tant el segment del tronc de la molècula, que manté la cadena unida, i una base, que interactua amb l'altra cadena d'ADN de l'hèlix. En general, una base unida a un sucre és anomenada nucleòsid, i una base unida a un sucre i un o més grups fosfat rep el nom de nucleòtid. Si diversos nucleòtids estan units, com en el cas de l'ADN, el polímer rep el nom de polinucleòtid.[7]

El tronc de la cadena d'ADN es compon de residus de fosfats i de sucres que es van alternant.[8] El sucre de l'ADN és la 2-desoxiribosa, que és una pentosa (amb cinc àtoms de carboni). Els sucres són units per grups fosfat que formen enllaços fosfodièster entre el tercer i el cinquè àtom de carboni dels anells de sucres adjacents. Aquests enllaços asimètrics signifiquen que una cadena d'ADN té una direcció. En una doble hèlix la direcció dels nucleòtids en una cadena és la inversa de la direcció de l'altra cadena. Aquest arranjament de les cadenes d'ADN és denominat antiparal·lel. Els extrems asimètrics de les cadenes són denominats extrems 5′ ("cinc primer") i 3′ ("tres primer"); el 5′ és el que té un grup fosfat terminal (acoblat al carboni número 5 de la base nitrogenada) i el 3′ és el que té un grup hidroxil terminal (acoblat al carboni número 3 de la base nitrogenada). Una de les diferències principals entre l'ADN i l'ARN és el sucre; en l'ARN, la 2-desoxiribosa és substituïda pel sucre pentosa alternatiu ribosa.[6]

La doble hèlix de l'ADN és estabilitzada per enllaços d'hidrogen entre les bases unides a les dues cadenes. Les quatre bases de l'ADN són l'adenina (abreujada com a A), la citosina (C), la guanina (G) i la timina (T). Aquestes quatre bases s'uneixen al sucre/fosfat per formar el nucleòtid complet, com es mostra en el cas del monofosfat d'adenosina.

Les bases es classifiquen en dos tipus; l'adenina i la guanina són compostos heterocíclics de cinc i sis membres anomenats purines, mentre que la citosina i la timina són anells de sis membres anomenats pirimidines.[6] Una cinquena base pirimidínica, anomenada uracil (U), pren sovint el lloc de la timina en l'ARN, i se'n diferencia pel fet que manca de grup metil a l'anell. L'uracil no se sol trobar a l'ADN, existint únicament com a producte de la desfragmentació de la citosina.

Solcs

Estructura d'una secció d'ADN. Les bases es troben en posició horitzontal entre les dues cadenes en espiral.[9] Versió animada a Fitxer:DNA orbit animated.gif - mesura més de 3 megabytes.

Normalment, la doble hèlix és una espiral que gira vers la dreta. A mesura que les cadenes d'ADN es cargolen l'una al voltant de l'altra, deixen espais entre cada conjunt de troncs fosfats, revelant els costats de les bases que hi ha a l'interior (vegeu l'animació). Hi ha dos solcs d'aquests que travessen la superfície de la doble hèlix; el solc major mesura 22 Å d'ample, i el solc menor en mesura 12.[10] L'estretor del solc menor implica que les vores de les bases són més accessibles al solc major. Per consegüent, les proteïnes com els factors de transcripció que es poden unir a seqüències específiques en ADN bicatenari sovint fan contacte amb els costats de les bases exposades al solc major.[11] Aquesta situació varia en conformacions inusuals de l'ADN dins la cèl·lula (vegeu més avall), però els solcs major i menor sempre són anomenats de manera que reflecteixin les diferències en la mida que es revelarien si l'ADN fos recargolat en la forma B usual.

Aparellament de bases

Article principal: Parell de bases

Cada tipus de base d'una cadena forma un enllaç amb només un tipus de base de l'altre cadena. Això rep el nom d'aparellament de bases complementàries. Les purines formen enllaços d'hidrogen per formar pirimidines; A només s'aparella amb T, i C només amb G. Aquesta configuració de dos nucleòtids units a través de la doble hèlix rep el nom de parell de bases. Com que els enllaços d'hidrogen no són covalents, poden trencar-se i refer-se amb relativa facilitat. Per tant, les dues cadenes d'ADN d'una doble hèlix poden ser separades com si fos una cremallera, o bé per una força mecànica o bé per una temperatura elevada.[12] Com a resultat d'aquesta complementarietat, tota la informació de la seqüència bicatenària d'una hèlix d'ADN està duplicada a cada cadena, cosa vital en la replicació de l'ADN. En efecte, aquesta interacció reversible i específica entre els parells de bases complementàries és essencial per totes les funcions de l'ADN en els éssers vius.[1]

Parell de bases GC amb tres enllaços d'hidrogen
Parell de bases AT amb dos enllaços d'hidrogen
A dalt, un parell de bases GC amb tres enllaços d'hidrogen. A sota, un parell de bases AT amb dos enllaços d'hidrogen. Les línies discontínues representen enllaços d'hidrogen no covalents entre els parells.

Els dos tipus de parells de bases formen nombres diferents d'enllaços d'hidrogen; els parells AT en formen dos, i els parells GC en formen tres (vegeu a l'esquerra). L'ADN amb un elevat contingut GC és més estable que l'ADN amb un contingut GC baix, però a diferència del que se sol creure, això no es deu a l'enllaç d'hidrogen addicional que té un parell de bases GC sinó a la contribucó de les accions d'apilament (els enllaços d'hidrogen només forneixen l'especificitat del parell, no l'estabilitat).[13] Per consegüent, tant el percentatge de parells de bases GC com la llargada total d'una doble hèlix d'ADN determinen la força de l'associació entre les dues cadenes d'ADN. Les hèlixs d'ADN llargues amb un alt contingut GC tenen cadenes amb una interacció més forta, mentre que les cadenes curtes amb un alt contingut AT les tenen amb una interacció més feble.[14] En la biologia, les parts de la doble hèlix de l'ADN que requereixen separar-se fàcilment, com ara la caixa de Pribnow TATAAT d'alguns promotors, tendeixen a tenir un alt contingut AT, fent que les cadenes siguin més fàcils de separar.[15] Al laboratori es pot mesurar la força d'aquesta interacció determinant la temperatura necessària per trencar els enllaços d'hidrogen, la seva temperatura de fusió (també anomenada valor Tm). Quan s'han desnaturalitzat tots els parells de bases d'una doble hèlix d'ADN, les cadenes se separen i existeixen en solució com a dues molècules completament independents. Aquestes molècules d'ADN monocatenari no tenen una única forma comuna, però algunes configuracions són més estables que altres.[16]

Sentit i antisentit

Article principal: Sentit (biologia molecular)

Una seqüència d'ADN és anomenada "sentit" si la seva seqüència és la mateixa que la d'una còpia d'ARN missatger que és traduïda en proteïna.[17] La seqüència de la cadena oposada és anomenada seqüència "antisentit". Tant les seqüències sentit com antisentit poden existir en diferents parts de la mateixa cadena d'ADN (és a dir, ambdues cadenes contenen seqüències sentit i antisentit). Tant en els eucariotes com en els procariotes es produeixen seqüències antisentit d'ARN, però les funcions d'aquests ARN no són completament clares.[18] Una proposta és que els ARN antisentit tenen un paper en la regulació de l'expressió gènica mitjançant l'aparellament de bases ARN-ARN.[19] En enginyeria genètica, la injecció de cadenes d'ARN antisentit s'ha utilitzat com a metodologia per suprimir temporalment l'expressió d'un gen.

Algunes seqüències d'ADN dels procariotes i eucariotes, i algunes més dels plasmidis i virus, fan més borrosa la distinció entre cadenes sentit i antisentit, car tenen gens que s'encavalquen.[20] En aquests casos, algunes seqüències d'ADN tenen un paper doble, codificant una proteïna quan se les llegeix en una cadena, i una segona proteïna quan se les llegeix en direcció oposada a l'altra cadena. En els eubacteris, aquest encavalcament pot estar implicat en la regulació de la transcripció gènica,[21] mentre que en els virus, els gens que s'encavalquen augmenten la quantitat d'informació que es pot codificar dins el petit genoma víric.[22]

Superenrotllament

Article principal: ADN superenrotllat

L'ADN es pot cargolar com una corda en un procés anomenat superenrotllament de l'ADN. Amb l'ADN en el seu estat "relaxat", una cadena sol girar al voltant de l'eix de la doble hèlix una vegada cada 10,4 parells de bases, però si es cargola l'ADN les cadenes queden enrotllades de manera més ferma o més laxa.[23] Si l'ADN es cargola en la direcció de l'hèlix, es tracta de superenrotllament positiu, i les bases queden unides més fermament. Si es cargola en la direcció oposada, es tracta de superenrotllament negatiu, i les bases se separen més fàcilment. A la natura, la majoria de l'ADN presenta un lleuger superenrotllament negatiu causat per enzims anomenats topoisomerases.[24] Aquests enzims també són necessaris per alleujar l'estrès de cargolament provocat a les cadenes d'ADN durant processos com ara la transcripció i la replicació de l'ADN.[25]

D'esquerra a dreta, les estructures de l'ADN A, B i Z.

Estructures alternatives

L'ADN existeix en moltes conformacions possibles que inclouen les formes ADN-A, ADN-B i ADN-Z.[8] Tanmateix, només s'ha observat directament en organismes funcionals l'ADN-B i l'ADN-Z. La conformació que adopta l'ADN depèn de la seqüència de l'ADN, la quantitat i la direcció del superenrotllament, les modificacions químiques de les bases i també les condicions de la solució, com ara la concentració d'ions metàl·lics i poliamines.[26] D'aquestes tres conformacions, la forma "B" descrita més amunt és la més habitual en les condicions regnants a les cèl·lules.[27] Les dues formes bicatenàries alternatives de l'ADN difereixen en la seva geometria i dimensions.

La forma A és una espiral ampla que gira vers la dreta, amb un solc menor som i ample i un solc major més profund i estret. La forma A es produeix en condicions no fisiològiques en mostres deshidratades d'ADN, mentre que dins la cèl·lula pot produir-se en aparellaments híbrids de cadenes d'ADN i ARN, així com en complexos enzim-ADN.[28][29] Els segments d'ADN les bases dels quals han estat modificades químicament per metilació poden experimentar un canvi posterior en la conformació i adoptar la forma Z. En aquesta forma, les cadenes es cargolen al voltant de l'eix helicoïdal en una espiral que gira vers l'esquerra, a l'inrevés de la forma B, més comuna.[30] Aquestes estructures inusuals poden ser reconegudes per proteïnes que s'uneixen específicament a l'ADN-Z, i podrien estar implicades en la regulació de la transcripció.[31]

Estructura d'un quàdruplex d'ADN format per repeticions de telòmers. La conformació del tronc d'ADN difereix significativament de l'estructura típica helicoïdal.[32]

Estructures quadruplèxiques

Article principal: G-quàdruplex

Als extrems dels cromosomes lineals hi ha regions especialitzades d'ADN anomenades telòmers. La funció principal d'aquestes regions és permetre a la cèl·lula replicar els extrems dels cromosomes mitjançant l'enzim telomerasa, car els enzims que normalment repliquen l'ADN no poden copiar les puntes dels extrems 3′ dels cromosomes.[33] Aquests tampons especialitzats dels cromosomes també contribueixen a protegir els extrems de l'ADN, i eviten que els sistemes de reparació de l'ADN de la cèl·lula els tractin com a danys que han de ser corregits.[34] En les cèl·lules humanes, els telòmers són habitualment tires d'ADN monocatenari que contenen diversos milers de repeticions d'una seqüència simple TTAGGG.[35]

Aquestes seqüències riques en guanina poden estabilitzar els extrems dels cromosomes formant estructures de conjunts apilonats d'unitats de quatre bases, en lloc dels parells de bases habituals que es troben en les altres molècules d'ADN. Aquí, quatre bases de guanina formen una placa plana i aleshores aquestes unitats de quatre bases planes s'apilonen l'una sobre l'altra, formant una estructura estable G-quadruplèxiques.[36] Aquestes estructures són estabilitzades per enllaços d'hidrogen entre les vores de les bases i la quelació d'un ió metall al centre de cada unitat de quatre bases.[37] També es poden formar altres estructures, amb el conjunt central de quatre bases sorgint o bé d'una única cadena plegada al voltant de les bases o bé de diverses cadenes paral·leles diferents, en què cadascuna contribueix una base a l'estructura central.

A més d'aquestes estructures apilonades, els telòmers també formen grans estructures anomenades llaços de telòmers, o llaços T. L'ADN monocatenari es va cargolant en un llarg cercle estabilitzat per proteïnes d'unió a telòmers.[38] A l'extrem mateix de l'enllaç T l'ADN telomèric monocatenari és acoblat a una regió d'ADN bicatenari per la cadena telomèrica que pertorba l'ADN de doble hèlix i per aparellament de bases amb una de les dues cadenes. Aquesta estructura tricatenària rep el nom d'enllaç de desplaçament o llaç D.[36]

Branca única Múltiples branques
Branca única Múltiples branques
L'ADN ramificat pot formar xarxes que contenen múltiples branques.

ADN ramificat

Articles principals: ADN ramificat i Nanotecnologia de l'ADN

En l'ADN, es produeix una esfilegada quan hi ha regions no complementàries a l'extrem d'una cadena doble d'ADN altrament complementària. Tanmateix, pot haver-hi ADN ramificat si s'introdueix una tercera cadena d'ADN que contingui regions adjacents capaces d'hibriditzar amb les regions esfilegades de la cadena doble preexistent. Tot i que l'exemple més senzill d'ADN ramificat només implica tres cadenes d'ADN, també són possibles complexos amb cadenes addicionals i múltiples branques.[39] L'ADN ramificat es pot utilitzar en la nanotecnologia per construir formes geomètriques (vegeu la secció d'usos en la tecnologia més avall).

Modificacions químiques

Citosina 5-metilcitosina Timina
citosina 5-metilcitosina timina
Estructura de la citosina amb i sense el grup 5-metil. Després de la desaminació, la 5-metilcitosina té la mateixa estructura que la timina.

Modificacions de bases

Article principal: Metilació de l'ADN

L'expressió dels gens està influïda per la manera en què l'ADN està empaquetat als cromosomes, en una estructura anomenada cromatina. Les modificacions de bases poden estar implicades en l'empaquetament; les regions que tenen poca o cap expressió gènica solen contenir nivells elevats de metilació de bases de citosina. Per exemple, la metilació de la citosina produeix 5-metilcitosina, que és important en la inactivació del cromosoma X.[40] El nivell mitjà de metilació varia entre organismes - el cuc Caenorhabditis elegans no presenta metilació de citosina, mentre que els vertebrats tenen nivells més elevats, i fins a un 1% del seu ADN conté 5-metilcitosina.[41] Malgrat la importància de la 5-metilcitosina, es pot desaminar per formar una base de timina, de manera que les citosines metilades són especialment propenses a mutar.[42] Altres modificacions de bases inclouen la metilació de l'adenina en els eubacteris, la presència de 5-hidroximetilcitosina al cervell,[43] i la glicosilació de l'uracil per produir la "base-J" en els cinetoplàstids.[44][45]

Danys

Article principal: Mutació
Un adducte covalent entre benzo[a]pirè, el principal mutagen del fum de tabac, i ADN.[46]

L'ADN pot resultar danyat per molts tipus diferents de mutàgens, que canvien la seqüència de l'ADN. Els mutàgens inclouen agents oxidants, agents alquilants i radiació electromagnètica d'alta energia com ara la llum ultraviolada i els rajos X. El tipus de danys a l'ADN depèn del tipus de mutagen. Per exemple, la llum ultraviolada pot danyar l'ADN produint dímers de timina, que són reticulacions entre bases de pirimidina.[47] D'altra banda, oxidants com ara els radicals lliures o el peròxid d'hidrogen causen múltiples formes de danys, incloent-hi modificacions de bases (particularment de guanosina) i trencaments de la cadena doble.[48] Una cèl·lula humana típica conté unes 150.000 bases que han patit danys oxidatius.[49] D'aquestes lesions oxidatives, les més perilloses són els trencaments de la cadena doble, car resulten difícils de reparar i poden produir mutuacions puntuals, insercions i delecions de la seqüència d'ADN, així com translocacions cromosòmiques.[50]

Molts mutàgens s'insereixen a l'espai entre dos parells de bases adjacents, un fenomen anomenat intercalació. La majoria d'intercaladors són molècules planars i aromàtiques, i inclouen el bromur d'etidi, la daunomicina i la doxorubicina. Perquè un intercalador es pugui inserir entre els parells de bases, cal que se separin les bases, distorsionant les cadenes d'ADN pel desenrotllament de la doble hèlix. Això inhibeix tant la transcripció com la replicació de l'ADN, provocant toxicitat i mutacions. Com a resultat, els intercaladors d'ADN sovint són carcinògens; l'epòxid diol de benzo[a]pirè, les acridines, les aflatoxines i el bromur d'etidi en són exemples coneguts.[51][52][53] Tanmateix, a causa de la seva capacitat d'inhibir la transcripció i la replicació de l'ADN, altres toxines similars també es fan servir en la quimioteràpia per inhibir les cèl·lules canceroses en creixement ràpid.[54]

Funcions biològiques

L'ADN existeix habitualment en forma de cromosomes linears en els eucariotes, i circulars en els procariotes. El conjunt de cromosomes d'una cèl·lula forma el seu genoma; el genoma humà té aproximadament 3.000 milions de parells de bases d'ADN arranjats en 46 cromosomes.[55] La informació emmagatzemada a l'ADN es troba a les seqüències de peces d'ADN anomenades gens. La transmissió de la informació genètica dels gens es fa per aparellemant de bases complementàries. Per exemple, en la transcripció, quan una cèl·lula utilitza la informació d'un gen, la seqüència d'ADN és copiada a una seqüència complementària d'ARN per mitjà de l'atracció entre l'ADN i els nucleòtids d'ARN adequats. Habitualment, aquesta còpia d'ARN és utilitzada per generar una seqüència proteica corresponent en un procés anomenat traducció que depèn de la mateixa interacció entre nucleòtids d'ARN. Alternativament, una cèl·lula pot simplement copiar la seva informació genètica en un procés anomenat replicació de l'ADN. Els detalls d'aquestes funcions estan explicats en altres articles; aquest es concentra en les interaccions entre l'ADN i les altres molècules que medien el funcionament del genoma.

Gens i genomes

L'ADN genòmic es troba al nucli cel·lular dels eucariotes, i en quantitats petites també als mitocondris i els cloroplasts. En els procariotes, l'ADN es troba dins un cos de forma irregular dins el citoplasma anomenat nucleoide.[56] La informació genètica d'un genoma es troba dins dels gens, i el conjunt complet d'informacions dins un organisme és el seu genotip. Un gen és una unitat d'herència i és una regió de l'ADN que influeix un caràcter determinat en un organisme. Els gens contenen una pauta oberta de lectura que es pot transcriure, així com seqüències reguladores com ara promotors i estimuladors, que controlen la transcripció de la pauta oberta de lectura.

En moltes espècies, només una fracció petita de tot el genoma codifica proteïnes. Per exemple, només un 1,5% del genoma humà es compon d'exons codificadors de proteïnes, i més del 50% de l'ADN humà es compon de seqüències repetides no codificants.[57] Les raons darrere la presència de tant ADN no codificant als genomes eucariotes i les extraordinàries diferències en la mida del genoma, o valor C, entre espècies representen un trencaclosques que ve de fa molt de temps, conegut com a paradoxa del valor C.[58] Tanmateix, les seqüències d'ADN que no codifiquen proteïnes encara poden codificar molècules funcionals d'ARN no codificant, que estan implicades en la regulació de l'expressió gènica.[59]

T7 ARN polimerasa (blau) produint ARNm (verd) a partir d'una plantilla d'ADN (taronja).[60]

Algunes seqüències d'ADN no codificant tenen un paper estructural als cromosomes. Els telòmers i centròmers típicament contenen pocs gens, però són importants pel funcionament i l'estabilitat dels cromosomes.[34][61] Una forma abundant d'ADN no codificant en els humans són els pseudogens, que són còpies de gens que han estat desactivats per mutació.[62] Sovint aquestes seqüències no són més que fòssils moleculars, tot i que a vegades serveixen com a matèria primera genètica per crear nous gens a través del procés de duplicació i divergència gènica.[63]

Transcripció i traducció

Un gen és una seqüència d'ADN que conté informació genètica i pot influir el fenotip d'un organisme. Dins d'un gen, la seqüència de bases al llarg d'una cadena d'ADN defineix una seqüència d'ARN missatger, que després defineix una o més seqüències de proteïnes. La relació entre les seqüències de nucleòtids dels gens i les seqüències d'aminoàcids de les proteïnes ve determinada per les regles de la traducció, conegudes col·lectivament com a codi genètic. El codi genètic es compon de "paraules" de tres lletres anomenades codons, formades a partir d'una seqüencia de tres nuclèotids (ex.; ACT, CAG, TTT).

En la transcripció, els codons d'un gen són copiats a l'ARN missatge per l'ARN polimerasa. Aquesta còpia d'ARN és posteriorment descodificada per un ribosoma que llegeix la seqüència d'ARN aparellant les bases de l'ARN missatger a l'ARN de transferència, que porta aminoàcids. Com que hi ha quatre bases en combinacions de tres lletres, hi ha 64 codons possibles (4^3 combinacions). Aquests codons codifiquen els vint aminoàcids estàndard, donant més d'un codó possible a la majoria d'aminoàcids. També hi ha tres codons "stop" o "sense sentit" que signifiquen que s'ha arribat a la fi de la regió codificant; són els codons TAA, TGA i TAG.

El codi genètic és universal: tot i que hi ha algunes exepcions (principalment entre els protozous) en totes les espècies cada codó es tradueix per el mateix aminoàcid. Això té especial importància, ja que és el que es permet que es puguin fer transgènics (on gens d'una espècie s'inserten en una altra).

La replicació de l'ADN. La doble hèlix és desenrotllada per una helicasa i una topoisomerasa. Aleshores, una ADN polimerasa produix la cadena líder. Una altra ADN polimerasa s'uneix a la cadena retardada. L'enzim genera segments discontinus (anomenats fragments d'Okazaki abans que l'ADN ligasa els uneixi.

Replicació

Article principal: Replicació de l'ADN

La divisió cel·lular és essencial pel creixement d'un organisme, però quan una cèl·lula es divideix li cal replicar l'ADN del seu genoma per tal que les dues cèl·lules filles tinguin la mateixa informació genètica que la mare. L'estructura bicatenària de l'ADN té un mecanisme simple per la replicació de l'ADN. Les dues cadenes són separades i aleshores un enzim anomenat ADN polimerasa recrea la seqüència d'ADN complementari de cada cadena. Aquest enzim crea la cadena complementària trobant la base correcta per mitjà d'aparellament de bases complementàries, i unint-la a la cadena original. Com que les ADN polimerases només poden allargar una cadena d'ADN en una direcció de 5′ a 3′, s'utilitzen diferents mecanismes per copiar les cadenes antiparal·leles de la doble hèlix.[64] D'aquesta manera, la base de la cadena inicial determina la base que apareixerà a la cadena nova, i la cèl·lula acaba amb una còpia perfecta del seu ADN.

Interacció amb les proteïnes

Totes les funcions de l'ADN depenen de les interaccions amb les proteïnes. Aquestes interaccions proteiques poden ser no específiques, o la proteïna es pot unir específicament a una sola seqüència d'ADN. Els enzims també es poden unir a l'ADN i, entre ells, les polimerases que copien la seqüència de bases d'ADN en la transcripció i la replicació de l'ADN són especialment importants.

Proteïnes d'unió a ADN

Article principal: Proteïna d'unió a ADN
Interacció de l'ADN amb histones
Interacció de l'ADN amb histones (a dalt, en blanc). Els aminoàcids bàsics d'aquestes proteïnes (a baix a l'esquerra, en blau) s'uneixen als grups fosfat àcids de l'ADN (a baix a la dreta, en vermell).

Les proteïnes estructurals que s'uneixen a l'ADN són exemples ben compresos d'interaccions no específiques entre ADN i proteïnes. Dins dels cromosomes, l'ADN es troba dins de complexos amb proteïnes estructurals. Aquestes proteïnes organitzen l'ADN en una estructura compacta anomenada cromatina. En els eucariotes, aquesta estructura implica la unió de l'ADN amb un complex de petites proteïnes bàsiques anomenades histones, mentre que en els procariotes hi estan implicats múltiples tipus de proteïnes.[65][66] Les histones formen un complex en forma de disc anomenat nucleosoma, que conté dues capes completes d'ADN bicatenari embolcallant-ne la superfície. Aquestes interaccions no específiques es formen quan residus bàsics de les histones formen enllaços iònics amb el tronc sucre-fosfat àcid de l'ADN, i per tant són en gran mesura independents de la seqüència de bases.[67] Les modificacions químiques d'aquests residus d'aminoàcids bàsics inclouen la metilació, la fosforilació i l'acetilació.[68] Aquests canvis químics alteren la força de la interacció entre l'ADN i les histones, fent que l'ADN sigui més o menys accessible pels factors de transcripció i canviant la velocitat de transcripció.[69] Altres proteïnes d'unió a ADN no específiques de la cromatina inclouen les proteïnes del grup d'alta mobilitat, que s'uneixen a ADN tort o distorsionat.[70] Aquestes proteïnes són importants en la flexió de les fileres de nucleosomes i els endrecen en estructures més grans que fan els cromosomes.[71]

Un grup distint de proteïnes d'unió a ADN són les que s'uneixen específicament a l'ADN monocatenari. En els humans, la proteïna de la replicació A és el membre més ben comprès d'aquesta família i se la fa servir en processos en què se separa la doble hèlix, incloent-hi la replicació, la reparació i la recombinació de l'ADN.[72] Sembla que aquestes proteïnes d'unió estabilitzen l'ADN monocatenari i eviten que formi llaços o sigui degradat per nucleases.

El factor de transcripció hèlix-gir-hèlix repressor lambda unit a la seva diana d'ADN.[73]

En canvi, altres proteïnes han evolucionat per unir-se a determinades seqüències d'ADN. Entre elles, les que han estat estudiades més intensament són els diversos factor de transcripció, que són proteïnes que regulen la transcripció. Cada factor de transcripció s'uneix a un conjunt particular de seqüències d'ADN i activa o inhibeix la transcripció dels gens que tenen aquestes seqüències a prop dels promotors. Els factors de transcripció fan això de dues maneres. Primerament, es poden unir a l'ARN polimerasa encarregada de la transcripció, o bé directament o bé a través d'altres proteïnes mediadores; això situa la polimerasa al promotor i li permet iniciar la transcripció.[74] Alternativament, els factors de transcripció poden unir-se a enzims que modifiquen les histones del promotor; això canvia l'accessibilitat de la plantilla de l'ADN per la polimerasa.[75]

Com que aquestes dianes d'ADN poden trobar-se arreu del genoma d'un organisme, els canvis en l'activitat d'un tipus de factor de transcripció pot afectar milers de gens.[76] Per consegüent, aquestes proteïnes són sovint la diana dels processos de transducció de senyals que controlen les respostes als canvis ambientals o la diferenciació i el desenvolupament cel·lulars. L'especificitat de les interaccions d'aquests factors de transcripció amb l'ADN deriva del fet que les proteïnes fan múltiples contactes amb les vores de les bases de l'ADN, permetent-los "llegir" la seqüència d'ADN. La majoria d'aquestes interaccions amb les bases es fan al solc major, on les bases són més accessibles.[77]

L'enzim de restricció EcoRV (verd) en un complex amb el seu substrat d'ADN[78]

Enzims modificadors de l'ADN

Nucleases i ligases

Les nucleases són enzims que tallen cadenes d'ADN catalitzant la hidròlisi dels enllaços fosfodièster. Les nucleases que hidrolitzen nucleòtids dels extrems de les cadenes reben el nom d'exonucleases, mentre que les endonucleases fan talls dins de les cadenes. Les nucleases utilitzades més sovint en la biologia molecular són les endonucleases de restricció, que retallen l'ADN a seqüències específiques. Aquestes seqüències s'anomenen dianes de restricció, i solen ésser palindròmiques (es llegeixen igual en els dos sentits de la cadena d'ADN). Per exemple, l'enzim EcoRV mostrat a l'esquerra reconeix la seqüència de sis bases 5′-GAT|ATC-3′ i fa un tall a la línia vertical. A la natura, aquests enzims protegeixen els bacteris de la infecció per part de bacteriòfags, digerint l'ADN del fag quan penetra a la cèl·lula bacteriana, actuant com a part del sistema de restricció-modificació.[79] En la tecnologia, aquestes nucleases específiques per cada seqüència s'utilitzen en la clonació molecular i la identificació de l'ADN.

Els enzims anomenats ADN ligases poden tornar a ajuntar cadenes d'ADN tallades o trencades.[80] Les ligases són particularment importants en la replicació de l'ADN de la cadena retardada, car uneixen els segments curts d'ADN produïts a la forqueta de replicació en una còpia completa de la plantilla d'ADN. També es fan servir en la reparació de l'ADN i la recombinació genètica.[80]

Topoisomerases i helicases

Les topoisomerases són enzims amb activitat tant de nucleasa com de ligasa. Aquestes proteïnes canvien la quantitat de superenrotllament de l'ADN. Alguns d'aquests enzims funcionen tallant l'hèlix d'ADN i permetent la rotació d'una secció, reduint-ne així el nivell de superenrotllament; aleshores l'enzim segella el trencament de l'ADN.[24] Altres tipus d'aquests enzims són capaços de tallar una hèlix d'ADN i aleshores fer passar una segona cadena d'ADN per aquest trencament, reajuntant així l'hèlix.[81] Les topoisomerases són necessàries per molts processos relacionats amb l'ADN, com ara la replicació i la transcripció de l'ADN.[25]

Les helicases són proteïnes que són una mena de motor molecular. Utilitzen l'energia química dels nucleòsids trifosfats, majoritàriament ATP, per trencar els enllaços d'hidrogen entre les bases i desenrotllar la doble hèlix d'ADN en cadenes separades.[82] Aquests enzims són essencials per la majoria de processos en què enzims necessiten accedir a les bases de l'ADN.

Polimerases

Les polimerases són enzims que sintetitzen cadenes de polinucleòtids a partir de nucleòsids trifosfats. La seqüència dels seus productes són còpies de cadenes ja existents de polinucleòtids, anomenades "plantilles". Aquests enzims funcionen afegint nucleòtids al grup hidroxil 3′ del nucleòtid previ d'una cadena d'ADN. Per consegüent, totes les polimerases funcionen en direcció 5′ a 3′.[83] Al lloc actiu d'aquests enzims, el nucleòsid trifosfat entrant aparella les bases amb la plantilla: això permet a les polimerases sintetitzar amb precisió la cadena complementària de la seva plantilla. Les polimerases es classifiquen segons el tipus de plantilla que utilitzen.

En la replicació de l'ADN, una ADN polimerasa ADN dependent crea una còpia d'una seqüència d'ADN. La precisió és vital en aquest procés, de manera que moltes d'aquestes polimerases tenen una activitat de correcció de proves. Aquí, la polimerasa reconeix els errors ocasionals de la reacció de síntesi per la manca d'aparellament de bases entre els nucleòtids mal aparellats. Si es detecta un malaparellament, s'engega una activitat d'exonucleasa 3′ a 5′ i la base incorrecta és eliminada.[84] En la majoria d'organismes les ADN polimerases funcionen en un gran complex anomenat replisoma que conté múltiples subunitats accessòries, com ara l'abraçadora d'ADN o les helicases.[85]

Les ADN polimerases ARN dependents són una classe especialitzada de polimerases que copien la seqüencia d'una cadena d'ARN en ADN. Inclouen la transcriptasa inversa, que és un enzim víric implicat en la infecció de les cèl·lules per retrovirus, o la telomerasa, que és necessària per la replicació dels telòmers.[33][86] La telomerasa és una polimerasa inusual, car conté la seva pròpia plantilla d'ARN com a part de la seva estructura.[34]

La transcripció és executada per una ARN polimerasa ADN dependent que copia la seqüència d'una cadena d'ADN en ARN. Per començar a transcriure un gen, l'ARN polimerasa s'uneix a una seqüència d'ADN anomenada "promotor" i separa les cadenes d'ADN. Aleshores copia la seqüència gènica a un transcrit d'ARN missatger fins que arriba a una regió de l'ADN anomenada "terminador", on s'atura i se separa de l'ADN. Com en les ADN polimerases ADN dependents humanes, l'ARN polimerasa II, l'enzim que transcriu la majoria de gens del genoma humà, opera com a part d'un gran complex proteic amb múltiples subunitats reguladores i accessòries.[87]

Recombinació genètica

Article principal: Recombinació genètica
Estructura de la junció de Holliday
Les quatre cadenes diferents d'ADN a la junció de Holliday
Estructura de ll'intermedi junció de Holliday de la recombinació genètica. Les quatre cadenes diferents d'ADN es presenten en vermell, blau, verd i groc.[88]
La recombinació implica el trencament i la reunió de dos cromosomes (M i F) per generar dos cromosomes rearranjats (C1 i C2).

Una hèlix d'ADN no interactua habitualment amb altres segments d'ADN, i en les cèl·lules humanes els diferents cromosomes fins i tot ocupen parts separades del nucli anomenades "territoris cromosòmics".[89] Aquesta separació física dels diferents cromosomes és important per la capacitat de l'ADN de funcionar com a dipòsit estable d'informació, car una de les poques ocasions en què interactuen els cromosomes és durant el creuament cromosòmic quan es recombinen. El creuament cromosòmic és quan dues hèlixs d'ADN es trenquen, s'intercanvien una secció i aleshores es tornen a ajuntar.

La recombinació permet als cromosomes intercanviar informació genètica i produeix noves combinacions de gens, cosa que augmenta l'eficàcia de la selecció natural i pot ser important en l'evolució ràpida de noves proteïnes.[90] La recombinació genètica també pot estar implicada en la reparació de l'ADN, particularment en la resposta cel·lular als trencaments de la cadena doble.[91]

La forma més comuna de creuament cromosòmic és la recombinació homòloga, en què els dos cromosomes implicats tenen seqüències molt similars. La recombinació no homòloga pot danyar les cèl·lules, car pot produir translocacions cromosòmiques i anormalitats genètiques. La reacció de recombinació és catalitzada per enzims coneguts com a recombinases, com ara RAD51.[92] El primer pas de la recombinació és un trencament de la cadena doble causat o bé per una endonucleasa o bé per danys a l'ADN.[93] Aleshores, una sèrie de passos catalitzats en part per la recombinasa porta a la unió de les dues hèlixs a través d'almenys una junció de Holliday, en què un segment d'una sola cadena de cada hèlix és unida a la cadena complementària de l'altra hèlix. La junció de Holliday és una estructura de junció tetraèdrica que es pot moure al llarg del parell de cromosomes, canviant una cadena per una altra. Aleshores, la reacció de recombinació és aturada pel trencament de la junció i el relligament de l'ADN alliberat.[94]

Evolució

Article principal: Hipòtesi del món d'ARN

L'ADN conté la informació genètica que permet funcionar, créixer i reproduir-se a tots els éssers vius actuals. Tanmateix, no està clar durant quant de temps dels 4.000 milions d'anys d'història de la vida l'ADN ha jugat aquest paper, car s'ha proposat que les primeres formes de vida podrien haver utilitzat ARN com a material genètic.[83][95] L'ARN podria haver servit com a part central del metabolisme cel·lular primitiu, car és capaç tant de transmetre informació genètica com de catalitzar reaccions com a part dels ribozims.[96] Aquest antic món d'ARN en què aquest àcid nucleic hauria estat utilitzat tant per la catàlisi com per la genètica podria haver influït l'evolució del codi genètic actual basat en quatre bases de nucleòtids. Això hauria passat perquè el nombre de bases úniques d'un organisme és un equilibri entre un nombre reduït de bases, que augmenta la precisió de la replicació, i un nombre gran de bases, que augmenta l'eficàcia catalitzadora dels ribozims.[97]

Desafortunadament, no hi ha proves directes dels sistemes genètics ancestrals, car resulta impossible recuperar ADN de la majoria de fòssils. Això es deu al fet que l'ADN sobreviu menys d'un milió d'anys al medi ambient i a poc a poc es degrada en petits fragments en dissolució.[98] S'ha al·legat el descobriment d'ADN més antic, notablement l'informe de l'aïllament d'un bacteri viable d'un cristall de sal de 250 milions d'anys d'antiguitat,[99] però aquestes al·legacions són controvertides.[100][101]

Usos en la tecnologia

Enginyeria genètica

S'han desenvolupat mètodes per purificar ADN dels organismes, com ara l'extracció amb fenol-cloroform, i manipular-lo al laboratori, com ara les digestions de restricció i la reacció en cadena de la polimerasa. La biologia i la bioquímica actuals fan un ús extens d'aquestes tècniques en la tecnologia de l'ADN recombinant. L'ADN recombinant és una seqüència d'ADN elaborada artificialment pels humans que ha estat assemblada a partir d'altres seqüències d'ADN. Es pot transformar en organismes en forma de plasmidis o en el format adequat, utilitzant un vector víric.[102] Els organismes genèticament modificats es poden utilitzar per generar productes com ara proteïnes recombinants, utilitzades en la investigació mèdica,[103] o ser cultivats en l'agricultura.[104][105]

Ciència forense

Article principal: Empremta genètica

Els científics forenses poden utilitzar l'ADN de sang, semen, pell, saliva o pèl trobats a l'escena d'un crim per identificar l'ADN d'un individu, com ara el perpetrador del crim. Aquest procés rep el nom d'identificació genètica, o més precisament, anàlisi de perfils d'ADN. En l'anàlisi de perfils d'ADN, es compara la llargada de seccions variables d'ADN repetitiu de diferents persones, com ara seqüències repetitives en tàndem i minisatèl·lits. Aquest mètode és habitualment una tècnica extremament fiable per identificar l'ADN corresponent.[106] Tanmateix, la identificació es pot complicar si l'escena està contaminada amb ADN de diverses persones.[107] L'anàlisi de perfils d'ADN fou desenvolupada el 1984 pel genetista britànic Sir Alec Jeffreys,[108] i fou utilitzada per primer cop en la ciència forense el 1988, per condemnar Colin Pitchfork pels assassinats d'Enderby.[109]

Als condemnats per determinats tipus de crims se'ls pot requerir que donin una mostra d'ADN per posar-la en una base de dades. Això ha ajudat els investigadors a resoldre casos antics en què només s'havia obtingut una mostra d'ADN de l'escena. L'anàlisi de perfils d'ADN també es pot fer servir per identificar les víctimes en els accidents amb molts morts.[110] D'altra banda, molts condemnats han estat posats en llibertat basant-se en les tècniques d'ADN, que no estaven disponibles quan es produí el crim.

Bioinformàtica

Article principal: Bioinformàtica

La bioinformàtica concerneix la manipulació, la cerca i la mineria de dades de dades de seqüències d'ADN. El desenvolupament de les tècniques per emmagatzemar i cercar en seqüències d'ADN ha conduït a avenços extensament aplicats en informàtica, especialment en algoritmes de recerca de cadenes, l'aprenentatge automàtic i la teoria de bases de dades.[111] Els algoritmes de recerca o aparellament de cadenes, que troben una ocurrència d'una seqüència de lletres dins d'una seqüència de lletres més gran, foren desenvolupats per buscar seqüències específiques de nucleòtids.[112] En altres aplicacions com ara processadors de text, sovint són suficients algoritmes simples per resoldre aquest problema, però les seqüències d'ADN fan que aquests algoritmes presentin un comportament de quasi-pitjor-cas a causa del seu nombre reduït de caràcters diferents. El problema relacionat de l'alineament de seqüències aspira a identificar seqüències homòlogues i ubicar les mutacions específiques que les fan diferents. Aquestes tècniques, especialment l'alineament múltiple de seqüències, són utilitzades en l'estudi de les relacions filogenètiques i el funcionament de les proteïnes[113] Els conjunts de dades que representen totes les seqüències d'ADN d'un genoma, com els que produeix el Projecte Genoma Humà, són difícils d'utilitzar sense anotacions, que etiqueten la situació dels gens i els elements reguladors de cada cromosoma. Les regions de les seqüències d'ADN que tenen els patrons específics associats amb els gens codificadors de proteïnes o ARN es poden identificar per mitjà d'algoritmes de detecció de gens, que permeten als investigadors predir la presència de productes gènics en un organisme fins i tot abans d'aïllar-los experimentalment.[114]

Nanotecnologia de l'ADN

L'estructura de l'ADN de l'esquerra (se'n mostra un esquema) s'autoassembla en l'estructura visualitzada per microscopi de força atòmica a la dreta. La nanotecnologia de l'ADN és el camp que intenta dissenyar estructures a nanoescala utilitzant les propietats de reconeixement molecular de les molècules d'ADN. Imatge de Strong, 2004.[1]
Article principal: Nanotecnologia de l'ADN

La nanotecnologia de l'ADN utilitza les propietats úniques de reconeixement molecular de l'ADN i altres àcids nucleics per crear complexos d'ADN ramificats autoassemblants amb propietats útils.[115] Així doncs, l'ADN s'utilitza com a material estructural i no com a portador d'informació biològica. Això ha conduït a la creació de llibrets periòdics bidimensionals (tant basats en lloses com mitjançant el mètode de l'origami d'ADN), així com estructures tridimensionals amb forma de políedre.[116] També s'han demostrat dispositius nanomecànics i l'autoassemblatge algorítmic,[117] i aquestes estructures d'ADN s'han utilitzat com a plantilla per l'arranjament d'altres molècules com ara les nanopartícules d'or o les proteïnes estreptavidines.[118]

Història i antropologia

Articles principals: Filogènia i Genealogia genètica

Com que l'ADN acumula mutacions al llarg del temps que després són heretades, conté informació històrica, i per mitjà de la comparació de les seqüències d'ADN els genetistes poden inferir la història evolutiva dels organismes, és a dir, la seva filogènesi.[119] Aquest camp de la filogènia és una eina potent en la biologia evolutiva. Si es comparen les seqüències d'ADN dins d'una espècie, els genetistes de poblacions poden esbrinar la història de poblacions concretes. Això es pot utilitzar en estudis, des de la genètica ecològica fins a l'antropologia; per exemple, s'estan utilitzant proves d'ADN per intentar identificar les Deu Tribus Perdudes d'Israel.[120][121]

També s'ha utilitzat l'ADN per investigar les relacions familiars modernes, com quan es va determinar l'estreta relació familiar entre els descendents de Sally Hemings i Thomas Jefferson. Aquest ús està estretament relacionat amb l'ús de l'ADN en investigacions criminals, del qual s'ha parlat més amunt. De fet, algunes investigacions criminals s'han resolt quan ADN de l'escena del crim s'ha relacionat amb el de familiars de l'individu culpable.[122]

Història de l'estudi de l'ADN

L'ADN fou aïllat per primer cop pel metge suís Friedrich Miescher, que el 1869 descobrí una substància microscòpica al pus de benes quirúrgiques per llençar. Com que es trobava al nucli de les cèl·lules, l'anomenà "nucleïna".[123] El 1919, Phoebus Levene identificà els nucleòtids compostos d'una base, un sucre i fosfats.[124] Levene suggerí que l'ADN consistia en una cadena de nucleòtids enllaçats pels grups fosfat. Tanmateix, Levene creia que la cadena era curta i que les bases es repetien en un ordre fix. Val a dir que en aquells temps era àmpliament acceptat que la informació genètica residia en les proteïnes i no pas en els àcids nucleics, i que aquests últims jugaven un paper estructural. El 1937, William Astbury produí els primers patrons de difracció de rajos X que demostraven que l'ADN té una estructura regular.[125]

El 1928, Frederick Griffith descobrí que els trets de la forma "llisa" de Pneumococcus es podien transferir a la forma "rugosa" del mateix bacteri si es mesclaven bacteris "llisos" morts amb la forma "rugosa" vivent.[126] Aquest sistema oferí el primer indici clar que l'ADN portava informació genètica — l'experiment d'Avery, MacLeod i McCarty — quan Oswald Avery, juntament amb els seus col·laboradors Colin MacLeod i Maclyn McCarty, identificà l'ADN com a principi transformador el 1943.[127] El paper de l'ADN en l'herència fou confirmat el 1952, quan Alfred Hershey i Martha Chase demostraren en l'experiment de Hershey i Chase que l'ADN és el material genètic del fag T2.[128]

El 1953, James D. Watson i Francis Crick suggeriren el que actualment s'accepta com el primer model de doble hèlix correcte de l'estructura de l'ADN a la revista Nature.[129] El seu model molecular de doble hèlix de l'ADN es basava en una única imatge per difracció de rajos X (etiquetada com a "Foto 51")[130] presa per Rosalind Franklin i Raymond Gosling al maig del 1952, així com la informació que les bases d'ADN estaven aparellades - obtinguda a través de comunicacions privades amb Erwin Chargaff als anys anteriors. Les regles de Chargaff tingueren un paper molt important en la determinació de les configuracions de doble hèlix tant pel B-ADN com per l'A-ADN.

Les proves experimentals que donaven suport el model de Watson i Crick foren publicades en una sèrie de cinc articles al mateix número de Nature.[131] D'aquests, l'article de Franklin i Goslin fou la primera publicació de les seves pròpies dades de la difracció de rajos X, i del seu mètode analític original que recolzava en part el model de Watson i Crick;[132][133] aquest número també contenia un article sobre l'estructura de l'ADN de Maurice Wilkins i dos dels seus col·laboradors, les anàlisis i els patrons de rajos X del B-ADN in vivo dels quals també recolzaven la presència in vivo de les configuracions en doble hèlix de l'ADN, com ho proposaven Crick i Watson en el seu model molecular de doble hèlix de l'ADN a les dues pàgines anteriors de Nature.[134] El 1962, després de la mort de Franklin, Watson, Crick i Wilkins foren guardonats conjuntament amb el Premi Nobel de Fisiologia o Medicina.[135]Malauradament, les regles del Premi Nobel d'aquell temps només permetien guardonar guanyadors vivents, però encara dura un intens debat sobre a qui se li hauria d'atribuir aquest descobriment.[136]

En una presentació influent del 1957, Crick postulà el dogma central de la biologia molecular, que preveia la relació entre l'ADN, l'ARN i les proteïnes, i articulà la "hipòtesi de l'adaptador".[137] La confirmació final del mecanisme de replicació que implicava l'estructura de doble hèlix arribà el 1958 amb l'experiment de Meselson i Stahl. [138] Treballs posteriors de Crick i col·laboradors demostraren que el codi genètic es basava en triplets no solapats de bases, anomenats codons, permetent a Har Gobind Khorana, Robert W. Holley i Marshall Warren Nirenberg desxifrar el codi genètic.[139] Aquests descobriments representen el naixement de la genètica molecular.

Vegeu també

Referències

  1. 1,0 1,1 Alberts, Bruce; Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff, Keith Roberts, i Peter Walters. Molecular Biology of the Cell; Fourth Edition. Nova York i Londres: Garland Science, 2002. ISBN 0-8153-3218-1. OCLC 145080076 48122761 57023651 69932405. 
  2. Butler, John M.. Forensic DNA Typing. Elsevier, 2001, p. 14–15. ISBN 978-0-12-147951-0. OCLC 223032110 45406517. 
  3. Mandelkern M, Elias J, Eden D, Crothers D. «The dimensions of DNA in solution». J Mol Biol, 152, 1, 1981, p. 153–61. DOI: 10.1016/0022-2836(81)90099-1. PMID: 7338906.
  4. Gregory S, et al.. «The DNA sequence and biological annotation of human chromosome 1». Nature, 441, 7091, 2006, p. 315–21. DOI: 10.1038/nature04727. PMID: 16710414.
  5. Watson J, Crick F. «Molecular structure of nucleic acids; a structure for deoxyribose nucleic acid» (PDF). Nature, 171, 4356, 1953, p. 737–8. DOI: 10.1038/171737a0. PMID: 13054692.
  6. 6,0 6,1 6,2 Berg J.; Tymoczko J.; Stryer L. (2002) Biochemistry. W. H. Freeman and Company ISBN 0-7167-4955-6
  7. Abbreviations and Symbols for Nucleic Acids, Polynucleotides and their Constituents IUPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclature (CBN), Consultat el 3 gener 2006
  8. 8,0 8,1 Ghosh A, Bansal M. «A glossary of DNA structures from A to Z». Acta Crystallogr D Biol Crystallogr, 59, Pt 4, 2003, p. 620–6. DOI: 10.1107/S0907444903003251. PMID: 12657780.
  9. Creat a partir de PDB 1D65
  10. Wing R.; Drew H.; Takano T.; Broka C.; Tanaka S.; Itakura K.; Dickerson R.. «Crystal structure analysis of a complete turn of B-DNA». Nature, 287, 5784, 1980, p. 755–8. DOI: 10.1038/287755a0. PMID: 7432492.
  11. Pabo C.; Sauer R.. «Protein-DNA recognition». Annu Rev Biochem, 53, 1984, p. 293–321. DOI: 10.1146/annurev.bi.53.070184.001453. PMID: 6236744.
  12. Clausen-Schaumann H.; Rief M.; Tolksdorf C.; Gaub H.. «Mechanical stability of single DNA molecules». Biophys J, 78, 4, 2000, p. 1997–2007. DOI: 10.1016/S0006-3495(00)76747-6. PMID: 10733978.
  13. Peter Yakovchuk, Ekaterina Protozanova i Maxim D. Frank-Kamenetskii. Base-stacking and base-pairing contributions into thermal stability of the DNA double helix. Nucleic Acids Research 2006 34(2):564-574; doi:10.1093/nar/gkj454 PMID 16449200
  14. Chalikian T.; Völker J.; Plum G.; Breslauer K.. «A more unified picture for the thermodynamics of nucleic acid duplex melting: a characterization by calorimetric and volumetric techniques». Proc Natl Acad Sci USA, 96, 14, 1999, p. 7853–8. DOI: 10.1073/pnas.96.14.7853. PMID: 10393911.
  15. de Haseth P.; Helmann J.. «Open complex formation by Escherichia coli RNA polymerase: the mechanism of polymerase-induced strand separation of double helical DNA». Mol Microbiol, 16, 5, 1995, p. 817–24. DOI: 10.1111/j.1365-2958.1995.tb02309.x. PMID: 7476180.
  16. Isaksson J.; Acharya S.; Barman J.; Cheruku P.; Chattopadhyaya J.. «Single-stranded adenine-rich DNA and RNA retain structural characteristics of their respective double-stranded conformations and show directional differences in stacking pattern». Biochemistry, 43, 51, 2004, p. 15996–6010. DOI: 10.1021/bi048221v. PMID: 15609994.
  17. Designation of the two strands of DNA JCBN/NC-IUB Newsletter 1989, Consultat el 7 maig 2008
  18. Hüttenhofer A.; Schattner P.; Polacek N.. «Non-coding RNAs: hope or hype?». Trends Genet, 21, 5, 2005, p. 289–97. DOI: 10.1016/j.tig.2005.03.007. PMID: 15851066.
  19. Munroe S.. «Diversity of antisense regulation in eukaryotes: multiple mechanisms, emerging patterns». J Cell Biochem, 93, 4, 2004, p. 664–71. DOI: 10.1002/jcb.20252. PMID: 15389973.
  20. Makalowska I.; Lin C.; Makalowski W.. «Overlapping genes in vertebrate genomes». Comput Biol Chem, 29, 1, 2005, p. 1–12. DOI: 10.1016/j.compbiolchem.2004.12.006. PMID: 15680581.
  21. Johnson Z.; Chisholm S.. «Properties of overlapping genes are conserved across microbial genomes». Genome Res, 14, 11, 2004, p. 2268–72. DOI: 10.1101/gr.2433104. PMID: 15520290.
  22. Lamb R.; Horvath C.. «Diversity of coding strategies in influenza viruses». Trends Genet, 7, 8, 1991, p. 261–6. PMID: 1771674.
  23. Benham C.; Mielke S.. «DNA mechanics». Annu Rev Biomed Eng, 7, 2005, p. 21–53. DOI: 10.1146/annurev.bioeng.6.062403.132016. PMID: 16004565.
  24. 24,0 24,1 Champoux J.. «DNA topoisomerases: structure, function, and mechanism». Annu Rev Biochem, 70, 2001, p. 369–413. DOI: 10.1146/annurev.biochem.70.1.369. PMID: 11395412.
  25. 25,0 25,1 Wang J.. «Cellular roles of DNA topoisomerases: a molecular perspective». Nat Rev Mol Cell Biol, 3, 6, 2002, p. 430–40. DOI: 10.1038/nrm831. PMID: 12042765.
  26. Basu H.; Feuerstein B.; Zarling D.; Shafer R.; Marton L.. «Recognition of Z-RNA and Z-DNA determinants by polyamines in solution: experimental and theoretical studies». J Biomol Struct Dyn, 6, 2, 1988, p. 299–309. PMID: 2482766.
  27. Leslie A. G.; Arnott S.; Chandrasekaran R, Ratliff RL. «Polymorphism of DNA double helices». J. Mol. Biol., 143, 1, 1980, p. 49–72. DOI: 10.1016/0022-2836(80)90124-2. PMID: 7441761.
  28. Wahl M.; Sundaralingam M.. «Crystal structures of A-DNA duplexes». Biopolymers, 44, 1, 1997, p. 45–63. DOI: 10.1002/(SICI)1097-0282(1997)44:1. PMID: 9097733.
  29. Lu X. J.; Shakked Z.; Olson W. K.. «A-form conformational motifs in ligand-bound DNA structures». J. Mol. Biol., 300, 4, 2000, p. 819–40. DOI: 10.1006/jmbi.2000.3690. PMID: 10891271.
  30. Rothenburg S.; Koch-Nolte F.; Haag F.. «DNA methylation and Z-DNA formation as mediators of quantitative differences in the expression of alleles». Immunol Rev, 184, 2001, p. 286–98. DOI: 10.1034/j.1600-065x.2001.1840125.x. PMID: 12086319.
  31. Oh D.; Kim Y.; Rich A.. «Z-DNA-binding proteins can act as potent effectors of gene expression in vivo». Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 99, 26, 2002, p. 16666–71. DOI: 10.1073/pnas.262672699. PMID: 12486233.
  32. Creat a partir de NDB UD0017
  33. 33,0 33,1 Greider C.; Blackburn E.. «Identification of a specific telomere terminal transferase activity in Tetrahymena extracts». Cell, 43, 2 Pt 1, 1985, p. 405–13. DOI: 10.1016/0092-8674(85)90170-9. PMID: 3907856.
  34. 34,0 34,1 34,2 Nugent C.; Lundblad V.. «The telomerase reverse transcriptase: components and regulation». Genes Dev, 12, 8, 1998, p. 1073–85. DOI: 10.1101/gad.12.8.1073. PMID: 9553037.
  35. Wright W-, Tesmer V.; Huffman K.; Levene S.; Shay J.. «Normal human chromosomes have long G-rich telomeric overhangs at one end». Genes Dev, 11, 21, 1997, p. 2801–9. DOI: 10.1101/gad.11.21.2801. PMID: 9353250.
  36. 36,0 36,1 Burge S.; Parkinson G.; Hazel P.; Todd A.; Neidle S.. «Quadruplex DNA: sequence, topology and structure». Nucleic Acids Res, 34, 19, 2006, p. 5402–15. DOI: 10.1093/nar/gkl655. PMC: 1636468. PMID: 17012276.
  37. Parkinson G.; Lee M.; Neidle S.. «Crystal structure of parallel quadruplexes from human telomeric DNA». Nature, 417, 6891, 2002, p. 876–80. DOI: 10.1038/nature755. PMID: 12050675.
  38. Griffith J.; Comeau L.; Rosenfield S.; Stansel R.; Bianchi A.; Moss H.; de Lange T.. «Mammalian telomeres end in a large duplex loop». Cell, 97, 4, 1999, p. 503–14. DOI: 10.1016/S0092-8674(00)80760-6. PMID: 10338214.
  39. Seeman N. C.. «DNA enables nanoscale control of the structure of matter». Q. Rev. Biophys., 38, 4, Novembre 2005, p. 363–71. DOI: 10.1017/S0033583505004087. PMID: 16515737.
  40. Klose R, Bird A. «Genomic DNA methylation: the mark and its mediators». Trends Biochem Sci, 31, 2, 2006, p. 89–97. DOI: 10.1016/j.tibs.2005.12.008. PMID: 16403636.
  41. Bird A. «DNA methylation patterns and epigenetic memory». Genes Dev, 16, 1, 2002, p. 6–21. DOI: 10.1101/gad.947102. PMID: 11782440.
  42. Walsh C, Xu G. «Cytosine methylation and DNA repair». Curr Top Microbiol Immunol, 301, 2006, p. 283–315. DOI: 10.1007/3-540-31390-7_11. PMID: 16570853.
  43. Kriaucionis S, Heintz N. «The nuclear DNA base 5-hydroxymethylcytosine is present in Purkinje neurons and the brain». Science, 324, 5929, Maig 2009, p. 929–30. DOI: 10.1126/science.1169786. PMID: 19372393.
  44. Ratel D, Ravanat J, Berger F, Wion D. «N6-methyladenine: the other methylated base of DNA». Bioessays, 28, 3, 2006, p. 309–15. DOI: 10.1002/bies.20342. PMID: 16479578.
  45. Gommers-Ampt J, Van Leeuwen F, de Beer A, Vliegenthart J, Dizdaroglu M, Kowalak J, Crain P, Borst P. «beta-D-glucosyl-hydroxymethyluracil: a novel modified base present in the DNA of the parasitic protozoan T. brucei». Cell, 75, 6, 1993, p. 1129–36. DOI: 10.1016/0092-8674(93)90322-H. PMID: 8261512.
  46. Creat a partir de PDB 1JDG
  47. Douki T, Reynaud-Angelin A, Cadet J, Sage E. «Bipyrimidine photoproducts rather than oxidative lesions are the main type of DNA damage involved in the genotoxic effect of solar UVA radiation». Biochemistry, 42, 30, 2003, p. 9221–6. DOI: 10.1021/bi034593c. PMID: 12885257.
  48. Cadet J, Delatour T, Douki T, Gasparutto D, Pouget J, Ravanat J, Sauvaigo S. «Hydroxyl radicals and DNA base damage». Mutat Res, 424, 1–2, 1999, p. 9–21. PMID: 10064846.
  49. Beckman KB, Ames BN. «Oxidative decay of DNA». J. Biol. Chem., 272, 32, Agost 1997, p. 19633–6. PMID: 9289489.
  50. Valerie K, Povirk L. «Regulation and mechanisms of mammalian double-strand break repair». Oncogene, 22, 37, 2003, p. 5792–812. DOI: 10.1038/sj.onc.1206679. PMID: 12947387.
  51. Ferguson L, Denny W. «The genetic toxicology of acridines». Mutat Res, 258, 2, 1991, p. 123–60. PMID: 1881402.
  52. Jeffrey A. «DNA modification by chemical carcinogens». Pharmacol Ther, 28, 2, 1985, p. 237–72. DOI: 10.1016/0163-7258(85)90013-0. PMID: 3936066.
  53. Stephens T, Bunde C, Fillmore B. «Mechanism of action in thalidomide teratogenesis». Biochem Pharmacol, 59, 12, 2000, p. 1489–99. DOI: 10.1016/S0006-2952(99)00388-3. PMID: 10799645.
  54. Braña M, Cacho M, Gradillas A, de Pascual-Teresa B, Ramos A. «Intercalators as anticancer drugs». Curr Pharm Des, 7, 17, 2001, p. 1745–80. DOI: 10.2174/1381612013397113. PMID: 11562309.
  55. Venter J, et al.. «The sequence of the human genome». Science, 291, 5507, 2001, p. 1304–51. DOI: 10.1126/science.1058040. PMID: 11181995.
  56. Thanbichler M, Wang S, Shapiro L. «The bacterial nucleoid: a highly organized and dynamic structure». J Cell Biochem, 96, 3, 2005, p. 506–21. DOI: 10.1002/jcb.20519. PMID: 15988757.
  57. Wolfsberg T, McEntyre J, Schuler G. «Guide to the draft human genome». Nature, 409, 6822, 2001, p. 824–6. DOI: 10.1038/35057000. PMID: 11236998.
  58. Gregory T. «The C-value enigma in plants and animals: a review of parallels and an appeal for partnership». Ann Bot (Lond), 95, 1, 2005, p. 133–46. DOI: 10.1093/aob/mci009. PMID: 15596463.
  59. The ENCODE Project Consortium. «Identification and analysis of functional elements in 1% of the human genome by the ENCODE pilot project». Nature, 447, 7146, 2007, p. 799–816. DOI: 10.1038/nature05874.
  60. Creat a partir de PDB 1MSW
  61. Pidoux A, Allshire R. «The role of heterochromatin in centromere function». Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci, 360, 1455, 2005, p. 569–79. DOI: 10.1098/rstb.2004.1611. PMC: 1569473. PMID: 15905142.
  62. Harrison P, Hegyi H, Balasubramanian S, Luscombe N, Bertone P, Echols N, Johnson T, Gerstein M. «Molecular fossils in the human genome: identification and analysis of the pseudogenes in chromosomes 21 and 22». Genome Res, 12, 2, 2002, p. 272–80. DOI: 10.1101/gr.207102. PMID: 11827946.
  63. Harrison P, Gerstein M. «Studying genomes through the aeons: protein families, pseudogenes and proteome evolution». J Mol Biol, 318, 5, 2002, p. 1155–74. DOI: 10.1016/S0022-2836(02)00109-2. PMID: 12083509.
  64. Albà M. «Replicative DNA polymerases». Genome Biol, 2, 1, 2001, p. REVIEWS3002. DOI: 10.1186/gb-2001-2-1-reviews3002. PMC: 150442. PMID: 11178285.
  65. Sandman K, Pereira S, Reeve J. «Diversity of prokaryotic chromosomal proteins and the origin of the nucleosome». Cell Mol Life Sci, 54, 12, 1998, p. 1350–64. DOI: 10.1007/s000180050259. PMID: 9893710.
  66. Dame RT. «The role of nucleoid-associated proteins in the organization and compaction of bacterial chromatin». Mol. Microbiol., 56, 4, 2005, p. 858–70. DOI: 10.1111/j.1365-2958.2005.04598.x. PMID: 15853876.
  67. Luger K, Mäder A, Richmond R, Sargent D, Richmond T. «Crystal structure of the nucleosome core particle at 2.8 A resolution». Nature, 389, 6648, 1997, p. 251–60. DOI: 10.1038/38444. PMID: 9305837.
  68. Jenuwein T, Allis C. «Translating the histone code». Science, 293, 5532, 2001, p. 1074–80. DOI: 10.1126/science.1063127. PMID: 11498575.
  69. Ito T. «Nucleosome assembly and remodelling». Curr Top Microbiol Immunol, 274, p. 1–22. PMID: 12596902.
  70. Thomas J. «HMG1 and 2: architectural DNA-binding proteins». Biochem Soc Trans, 29, Pt 4, 2001, p. 395–401. DOI: 10.1042/BST0290395. PMID: 11497996.
  71. Grosschedl R, Giese K, Pagel J. «HMG domain proteins: architectural elements in the assembly of nucleoprotein structures». Trends Genet, 10, 3, 1994, p. 94–100. DOI: 10.1016/0168-9525(94)90232-1. PMID: 8178371.
  72. Iftode C, Daniely Y, Borowiec J. «Replication protein A (RPA): the eukaryotic SSB». Crit Rev Biochem Mol Biol, 34, 3, 1999, p. 141–80. DOI: 10.1080/10409239991209255. PMID: 10473346.
  73. Creat a partir de PDB 1LMB
  74. Myers L, Kornberg R. «Mediator of transcriptional regulation». Annu Rev Biochem, 69, 2000, p. 729–49. DOI: 10.1146/annurev.biochem.69.1.729. PMID: 10966474.
  75. Spiegelman B, Heinrich R. «Biological control through regulated transcriptional coactivators». Cell, 119, 2, 2004, p. 157–67. DOI: 10.1016/j.cell.2004.09.037. PMID: 15479634.
  76. Li Z, Van Calcar S, Qu C, Cavenee W, Zhang M, Ren B. «A global transcriptional regulatory role for c-Myc in Burkitt's lymphoma cells». Proc Natl Acad Sci USA, 100, 14, 2003, p. 8164–9. DOI: 10.1073/pnas.1332764100. PMC: 166200. PMID: 12808131.
  77. Pabo C, Sauer R. «Protein-DNA recognition». Annu Rev Biochem, 53, 1984, p. 293–321. DOI: 10.1146/annurev.bi.53.070184.001453. PMID: 6236744.
  78. Creat a partir de PDB 1RVA
  79. Bickle T, Krüger D. «Biology of DNA restriction». Microbiol Rev, 57, 2, 1993, p. 434–50. PMC: 372918. PMID: 8336674.
  80. 80,0 80,1 Doherty A, Suh S. «Structural and mechanistic conservation in DNA ligases». Nucleic Acids Res, 28, 21, 2000, p. 4051–8. DOI: 10.1093/nar/28.21.4051. PMC: 113121. PMID: 11058099.
  81. Schoeffler A, Berger J. «Recent advances in understanding structure-function relationships in the type II topoisomerase mechanism». Biochem Soc Trans, 33, Pt 6, 2005, p. 1465–70. DOI: 10.1042/BST20051465. PMID: 16246147.
  82. Tuteja N, Tuteja R. «Unraveling DNA helicases. Motif, structure, mechanism and function». Eur J Biochem, 271, 10, 2004, p. 1849–63. DOI: 10.1111/j.1432-1033.2004.04094.x. PMID: 15128295.
  83. 83,0 83,1 Joyce C, Steitz T. «Polymerase structures and function: variations on a theme?». J Bacteriol, 177, 22, 1995, p. 6321–9. PMC: 177480. PMID: 7592405.
  84. Hubscher U, Maga G, Spadari S. «Eukaryotic DNA polymerases». Annu Rev Biochem, 71, 2002, p. 133–63. DOI: 10.1146/annurev.biochem.71.090501.150041. PMID: 12045093.
  85. Johnson A, O'Donnell M. «Cellular DNA replicases: components and dynamics at the replication fork». Annu Rev Biochem, 74, 2005, p. 283–315. DOI: 10.1146/annurev.biochem.73.011303.073859. PMID: 15952889.
  86. Tarrago-Litvak L, Andréola M, Nevinsky G, Sarih-Cottin L, Litvak S. «The reverse transcriptase of HIV-1: from enzymology to therapeutic intervention». Faseb J, 8, 8, Maig 1994, p. 497–503. PMID: 7514143.
  87. Martinez E. «Multi-protein complexes in eukaryotic gene transcription». Plant Mol Biol, 50, 6, 2002, p. 925–47. DOI: 10.1023/A:1021258713850. PMID: 12516863.
  88. Creat a partir de PDB 1M6G
  89. Cremer T, Cremer C. «Chromosome territories, nuclear architecture and gene regulation in mammalian cells». Nat Rev Genet, 2, 4, 2001, p. 292–301. DOI: 10.1038/35066075. PMID: 11283701.
  90. Pál C, Papp B, Lercher M. «An integrated view of protein evolution». Nat Rev Genet, 7, 5, 2006, p. 337–48. DOI: 10.1038/nrg1838. PMID: 16619049.
  91. O'Driscoll M, Jeggo P. «The role of double-strand break repair - insights from human genetics». Nat Rev Genet, 7, 1, 2006, p. 45–54. DOI: 10.1038/nrg1746. PMID: 16369571.
  92. Vispé S, Defais M. «Mammalian Rad51 protein: a RecA homologue with pleiotropic functions». Biochimie, 79, 9-10, 1997, p. 587–92. DOI: 10.1016/S0300-9084(97)82007-X. PMID: 9466696.
  93. Neale MJ, Keeney S. «Clarifying the mechanics of DNA strand exchange in meiotic recombination». Nature, 442, 7099, 2006, p. 153–8. DOI: 10.1038/nature04885. PMID: 16838012.
  94. Dickman M, Ingleston S, Sedelnikova S, Rafferty J, Lloyd R, Grasby J, Hornby D. «The RuvABC resolvasome». Eur J Biochem, 269, 22, 2002, p. 5492–501. DOI: 10.1046/j.1432-1033.2002.03250.x. PMID: 12423347.
  95. Orgel L. «Prebiotic chemistry and the origin of the RNA world» (PDF). Crit Rev Biochem Mol Biol, 39, 2, 2004, p. 99–123. DOI: 10.1080/10409230490460765. PMID: 15217990.
  96. Davenport R. «Ribozymes. Making copies in the RNA world». Science, 292, 5520, 2001, p. 1278. DOI: 10.1126/science.292.5520.1278a. PMID: 11360970.
  97. Szathmáry E. «What is the optimum size for the genetic alphabet?» (PDF). Proc Natl Acad Sci USA, 89, 7, 1992, p. 2614–8. DOI: 10.1073/pnas.89.7.2614. PMID: 1372984.
  98. Lindahl T. «Instability and decay of the primary structure of DNA». Nature, 362, 6422, 1993, p. 709–15. DOI: 10.1038/362709a0. PMID: 8469282.
  99. Vreeland R, Rosenzweig W, Powers D. «Isolation of a 250 million-year-old halotolerant bacterium from a primary salt crystal». Nature, 407, 6806, 2000, p. 897–900. DOI: 10.1038/35038060. PMID: 11057666.
  100. Hebsgaard M, Phillips M, Willerslev E. «Geologically ancient DNA: fact or artefact?». Trends Microbiol, 13, 5, 2005, p. 212–20. DOI: 10.1016/j.tim.2005.03.010. PMID: 15866038.
  101. Nickle D, Learn G, Rain M, Mullins J, Mittler J. «Curiously modern DNA for a "250 million-year-old" bacterium». J Mol Evol, 54, 1, 2002, p. 134–7. DOI: 10.1007/s00239-001-0025-x. PMID: 11734907.
  102. Goff SP, Berg P. «Construction of hybrid viruses containing SV40 and lambda phage DNA segments and their propagation in cultured monkey cells». Cell, 9, 4 PT 2, 1976, p. 695–705. DOI: 10.1016/0092-8674(76)90133-1. PMID: 189942.
  103. Houdebine L. «Transgenic animal models in biomedical research». Methods Mol Biol, 360, p. 163–202. PMID: 17172731.
  104. Daniell H, Dhingra A. «Multigene engineering: dawn of an exciting new era in biotechnology». Curr Opin Biotechnol, 13, 2, 2002, p. 136–41. DOI: 10.1016/S0958-1669(02)00297-5. PMID: 11950565.
  105. Job D. «Plant biotechnology in agriculture». Biochimie, 84, 11, 2002, p. 1105–10. DOI: 10.1016/S0300-9084(02)00013-5. PMID: 12595138.
  106. Collins A, Morton N. «Likelihood ratios for DNA identification» (PDF). Proc Natl Acad Sci USA, 91, 13, 1994, p. 6007–11. DOI: 10.1073/pnas.91.13.6007. PMID: 8016106.
  107. Weir B, Triggs C, Starling L, Stowell L, Walsh K, Buckleton J. «Interpreting DNA mixtures». J Forensic Sci, 42, 2, 1997, p. 213–22. PMID: 9068179.
  108. Jeffreys A, Wilson V, Thein S. «Individual-specific 'fingerprints' of human DNA». Nature, 316, 6023, 1985, p. 76–9. DOI: 10.1038/316076a0. PMID: 2989708.
  109. Colin Pitchfork — first murder conviction on DNA evidence also clears the prime suspect Forensic Science Service. Consultat el 23 desembre 2006
  110. «DNA Identification in Mass Fatality Incidents». National Institute of Justice, Setembre 2006.
  111. Baldi, Pierre & Brunak, Soren (2001), Bioinformatics: The Machine Learning Approach, MIT Press, ISBN 978-0-262-02506-5, OCLC 45951728 57562233.
  112. Gusfield, Dan. Algorithms on Strings, Trees, and Sequences: Computer Science and Computational Biology. Cambridge University Press, 15 gener 1997. ISBN 978-0-521-58519-4.
  113. Sjölander K. «Phylogenomic inference of protein molecular function: advances and challenges». Bioinformatics, 20, 2, 2004, p. 170–9. DOI: 10.1093/bioinformatics/bth021. PMID: 14734307.
  114. Mount DM. Bioinformatics: Sequence and Genome Analysis. 2. Cold Spring Harbor (Nova York): Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2004. ISBN 0879697121. OCLC 55106399. 
  115. Rothemund PW. «Folding DNA to create nanoscale shapes and patterns». Nature, 440, 7082, Març 2006, p. 297–302. DOI: 10.1038/nature04586. PMID: 16541064.
  116. Andersen ES, Dong M, Nielsen MM, et al.. «Self-assembly of a nanoscale DNA box with a controllable lid». Nature, 459, 7243, Maig 2009, p. 73–6. DOI: 10.1038/nature07971. PMID: 19424153.
  117. Ishitsuka Y, Ha T. «DNA nanotechnology: a nanomachine goes live». Nat Nanotechnol, 4, 5, Maig 2009, p. 281–2. DOI: 10.1038/nnano.2009.101. PMID: 19421208.
  118. Aldaye FA, Palmer AL, Sleiman HF. «Assembling materials with DNA as the guide». Science, 321, 5897, Setembre 2008, p. 1795–9. DOI: 10.1126/science.1154533. PMID: 18818351.
  119. Wray G. «Dating branches on the tree of life using DNA». Genome Biol, 3, 1, 2002, p. REVIEWS0001. DOI: 10.1046/j.1525-142X.1999.99010.x. PMC: 150454. PMID: 11806830.
  120. Lost Tribes of Israel, NOVA, Data d'emissió a PBS: 22 febrer 2000. Transcrit disponible a PBS.org, (consultat el 4 març 2006)
  121. Kleiman, Yaakov. "The Cohanim/DNA Connection: The fascinating story of how DNA studies confirm an ancient biblical tradition". aish.com (13 gener 2000). Consultat el 4 març 2006.
  122. Bhattacharya, Shaoni. "Killer convicted thanks to relative's DNA". newscientist.com (20 abril 2004). Consultat el 22 desembre 2006
  123. Dahm R. «Discovering DNA: Friedrich Miescher and the early years of nucleic acid research». Hum. Genet., 122, 6, Gener 2008, p. 565–81. DOI: 10.1007/s00439-007-0433-0. PMID: 17901982.
  124. Levene P,. «The structure of yeast nucleic acid». J Biol Chem, 40, 2, Desembre 1919, p. 415–24.
  125. Astbury W,. «Nucleic acid». Symp. SOC. Exp. Bbl, 1, 66, 1947.
  126. Lorenz MG, Wackernagel W. «Bacterial gene transfer by natural genetic transformation in the environment». Microbiol. Rev., 58, 3, Setembre 1994, p. 563–602. PMC: 372978. PMID: 7968924.
  127. Avery O, MacLeod C, McCarty M. «Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types. Inductions of transformation by a desoxyribonucleic acid fraction isolated from pneumococcus type III». J Exp Med, 79, 2, 1944, p. 137–158. DOI: 10.1084/jem.79.2.137.
  128. Hershey A, Chase M. «Independent functions of viral protein and nucleic acid in growth of bacteriophage» (PDF). J Gen Physiol, 36, 1, 1952, p. 39–56. DOI: 10.1085/jgp.36.1.39. PMID: 12981234.
  129. Watson J.D. and Crick F.H.C.. «A Structure for Deoxyribose Nucleic Acid» (PDF). Nature, 171, 1953, p. 737–738. DOI: 10.1038/171737a0. PMID: 13054692 [Consulta: 4 maig 2009].
  130. El patró de rajos X del B-ADN a la dreta d'aquesta imatge enllaçada fou obtingut per Rosalind Franklin i Raymond Gosling al maig del 1952 a nivells d'alta hidratació de l'ADN, i fou etiquetat com a "Foto 51"
  131. Nature Archives Double Helix of DNA: 50 Years
  132. Franklin, Rosalind and Gosling, Raymond. «Molecular Configuration in Sodium Thymonucleate. Franklin R. and Gosling R.G» (Noia 64 mimetypes pdf.pngPDF). Nature, 171, 1953, p. 740–1. DOI: 10.1038/171740a0. PMID: 13054694.
  133. Imatge original per difracció de rajos X
  134. Wilkins M.H.F.; A.R. Stokes A.R. & Wilson, H.R.. «Molecular Structure of Deoxypentose Nucleic Acids» (PDF). Nature, 171, 1953, p. 738–740. DOI: 10.1038/171738a0. PMID: 13054693.
  135. El Premi Nobel de Fisiologia o Medicina del 1962 Nobelprize.org Consultat el 22 desembre 2006
  136. Brenda Maddox. The double helix and the 'wronged heroine' (Noia 64 mimetypes pdf.pngPDF). 421, p. 407–408. DOI 10.1038/nature01399. 
  137. Crick, F.H.C. On degenerate templates and the adaptor hypothesis. genome.wellcome.ac.uk (conferència, 1955). Consultat el 22 desembre 2006 Noia 64 mimetypes pdf.pngPDF
  138. Meselson M, Stahl F. «The replication of DNA in Escherichia coli». PNAS, 44, 7, 1958, p. 671–82. DOI: 10.1073/pnas.44.7.671. PMID: 16590258.
  139. El Premi Nobel de Fisiologia o Medicina del 1968 Nobelprize.org Consultat el 22 desembre 2006

Bibliografia

  • Calladine, Chris R.; Drew, Horace R.; Luisi, Ben F.; Travers, Andrew A.. Understanding DNA: the molecule & how it works. Amsterdam: Elsevier Academic Press, 2003. ISBN 0-12-155089-3. 
  • Dennis, Carina; Julie Clayton. 50 years of DNA. Basingstoke: Palgrave Macmillan, 2003. ISBN 1-4039-1479-6. 
  • Judson, Horace Freeland. The eighth day of creation: makers of the revolution in biology. Plainview (Nova York): CSHL Press, 1996. ISBN 0-87969-478-5. 
  • Olby, Robert C.. The path to the double helix: the discovery of DNA. Nova York: Dover Publications, 1994. ISBN 0-486-68117-3. , publicat inicialment a l'octubre del 1974 per MacMillan, amb un prefaci de Francis Crick; llibre de text sobre l'ADN, revisat el 1994 amb una nota final de nou pàgines.
  • Olby, Robert C.. Francis Crick: A Biography. Plainview (Nova York): Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2009. ISBN 0-87969-798-9. 
  • Ridley, Matt. Francis Crick: discoverer of the genetic code. Ashland (Ohio): Eminent Lives, Atlas Books, 2006. ISBN 0-06-082333-X. 
  • Berry, Andrew; Watson, James D.. DNA: the secret of life. Nova York: Alfred A. Knopf, 2003. ISBN 0-375-41546-7. 
  • Stent, Gunther Siegmund; Watson, James D.. The double helix: a personal account of the discovery of the structure of DNA. Nova York: Norton, 1980. ISBN 0-393-95075-1. 
  • Wilkins, Maurice. The third man of the double helix the autobiography of Maurice Wilkins. Cambridge (Regne Unit): University Press, 2003. ISBN 0-19-860665-6. 

Enllaços externs

A Wikimedia Commons hi ha contingut multimèdia relatiu a: Àcid desoxiribonucleic



Principals famíles bioquímiques
Àcids nucleics | Alcaloides | Aminoàcids | Carbohidrats | Carotenoides | Cofactors enzimàtics | Esteroides | Flavonoides | Glicòsids | Lípids | Pèptids | Policètids | Tetrapirrols | Terpens
Anàlegs d'àcids nucleics: Tipus d'Àcids nucleics Anàlegs d'àcids nucleics :
Bases nitrogenades: Adenina | Timina | Uracil | Guanina | Citosina | Purina | Pirimidina
Nucleòsids: Adenosina | Uridina | Guanosina | Citidina | Desoxiadenosina | Timidina | Desoxiguanosina | Desoxicitidina
Nucleòtids: AMP | UMP | GMP | CMP | ADP | UDP | GDP | CDP | ATP | UTP | GTP | CTP | AMPc | GMPc | ADPRc
Desoxinucleòtids: dAMP | TMP | dGMP | dCMP | dADP | TDP | dGDP | dCDP | dATP | TTP | dGTP | dCTP
Àcids ribobonucleics: ARNm | ARNt | ARNr | ARNn | ARNnc | ARNmi
Àcids desoxiribonucleics: ADMmt | ADNc
Anàlegs d'àcids nucleics: AGN | APN | ATN | Morfolí | ARNin
Seqüències: Plasmidi | Còsmid | CAB | CAH | Cromosoma | Oligonucleòtid